Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ), по данным отечественных авторов, впервые был занесен на территорию нашей страны с импортированным скотом. В настоящее время ввоз крупного рогатого скота в Российскую Федерацию продолжается, поэтому риск заноса этой болезни достаточно высок, в том числе и с импортируемой спермой. Зарубежные авторы сообщают о выделении герпесвируса крупного рогатого скота 1 типа (возбудителя ИРТ) от европейских популяций диких парнокопытных животных. В настоящем исследовании мы установили наличие антител к возбудителю ИРТ в большинстве проб сыворотки крови, отобранных случайным образом у диких парнокопытных животных, ввозимых из-за рубежа. У 7 особей в смывах со слизистой оболочки носовой полости обнаружили генетический материал герпесвируса крупного рогатого скота 1 типа, что подтверждает возможность заноса возбудителя ИРТ КРС с этими животными в нашу страну
Разработан комбинированный подход для идентификации и определения антибиотиков хинолонового ряда в лекарственных препаратах с использованием цифровой цветометрии твердофазной флуоресценции и хемометрического анализа. Изучена собственная флуоресценция хинолонов и сенсибилизированная хинолонами флуоресценция европия(III) на различных матрицах. Предложена тест-система, состоящая из четырех индикаторных зон. При облучении УФ-светом (365 нм) нанесенных на индикаторные зоны тест-систем растворов хинолонов наблюдается синяя на целлюлозной бумаге (ЦБ), пластинах для высокоэффективной тонкослойной хроматографии (ВЭТСХ), и розовая (ЦБ–Eu, ВЭТСХ–Eu) флуоресценция. Интенсивность флуоресценции на поверхности матриц измерена с помощью смартфона. Показана возможность использования хемометрического анализа, позволяющего сократить время анализа и визуализировать данные исследования. Обработка данных проведена методами главных компонент, иерархического кластерного анализа и метода k-среднего c применением программного обеспечения XLSTAT. Проведены идентификация и оценка содержания антибиотиков хинолонового ряда в таблетированных формах с использованием хемометрического анализа. Градуировочные зависимости в методах РСА и k-среднего имеют логарифмический вид в диапазонах определяемых содержаний 0.5–250 мкг/мл (R2 ≥ 0.98). Предложена методика определения фторхинолонов в лекарственных препаратах. Относительное стандартное отклонение не превышает 0.09.В. Г. Амелин, З. А. Ч. Шаока, Д. С. Большаков, А. В. Третьяков
Законодательством ЕАЭС практически не установлены допустимые уровни ветеринарных лекарственных средств в молоке, что создает проблемы для их применения. Допустимые уровни будут приняты дополнением к ТР ТС 021/2011, однако вопрос распространения их на готовую молочную продукцию требует тщательной проработки.
В процессе термической обработки в растительных жирах образуются опасные вещества - эфиры 3-МХПД и глицидиловые эфиры жирных кислот, наиболее высокие концентрации - в пальмовом масле. В странах ЕС установлены допустимые уровни данных загрязнителей в продуктах питания, разработан ряд рекомендаций по минимизации загрязнения путем оптимизации технологических процессов и выбора сырья. Между тем в нашей стране достаточного внимания данной проблеме не уделяется.
Известно, что микотоксины снижают качество не только кормов, но и продукции животноводства, делая ее крайне опасной для человека и особенно детей. Классический пример - превращение афлатоксина В1 в афлатоксин М1, который способен накапливаться в молоке. Микотоксины отрицательно влияют на нормальное функционирование органов, включая рубец, кишечный тракт, печень, почки, а также репродуктивной, нервной системы и т.д. В условиях молочной фермы контаминация кормов микотоксинами повышает риск возникновения у животных таких патологий, как смещенный сычуг, кетоз, задержка отделения плаценты, метрит, мастит и нарушение жирового обмена. Данные заболевания сложно диагностировать, так как они характеризуются длительным скрытым течением. Коррекция рациона и изменение системы управления хозяйством (распределение по группам и стойлам, перевод коров в другие места) не являются эффективными мерами, хотя и могут послужить факторами, определяющими предрасположенность к микотоксикозам. Цель нашей работы - установить степень контаминации кормов микотоксинами, а также оценить сорбционные свойства кормовой добавки МаксиСорб®. Исследования проводили по общепринятым методам. Установили, что сорбционная активность МаксиСорб® в отношении афлатоксина и охратоксина достигает соответственно 100 и 99 %, зеараленона - 87 %, Т-2 токсина и дезоксиваленола -73 и 77 %.
Разработан набор реагентов для выявления генетического материала возбудителя новой коронавирусной инфекции в образцах от животных методом ОТ-ПЦР в режиме «реального времени». Амплификацию и детекцию SARS-CoV-2 проводят по двум независимым генам-мишеням. Для контроля качества взятия образца в набор введена система амплификации внутреннего эндогенного контроля (геномной ДНК животных). Набор продемонстрировал высокую специфичность в рамках использованной панели контрольных образцов. Аналитическая чувствительность его при исследовании респираторных мазков и внутренних органов составила 5х104 копий/мл. Доказана хорошая устойчивость компонентов к условиям транспортирования и многократному замораживанию/оттаиванию. При сравнении с ПЦР-наборами отечественных и иностранных производителей, используемых в медицинских лабораториях для выявления генетического материала возбудителя SARS-CoV-2, он показал сопоставимую чувствительность, высокую эффективность ПЦР, а также удобство применения. Набор апробирован на образцах биологического материала от разных видов животных. Один образец от кошки дал положительный результат.
Методика непрямого конкурентного твердофазного иммуноферментного анализа разработана для специфического и группового определения остатков фторхинолонов в продукции животноводства. Энрофлоксацин выявляли в диапазоне 0,1 - 40 мкг/л (в модельной системе) с использованием антител против энрофлоксацин-БСА. Групп-специфические поликлональные антисыворотки, полученные путем иммунизации кроликов конъюгатом смеси фторхинолонов (ципрофлоксацина, норфлоксацина, энрофлоксацина и офлоксацина) с гемоцианином из лимфы улитки, показали широкую специфичность к данным соединениям. Методика оптимизирована для определения остатков фторхинолонов в меде, мясе, молоке, креветках, рыбе и яйцах. Предел обнаружения составил 90 мкг/кг при использовании полиспецифических антител и 1 мкг/кг - с применением специфической сыворотки против энрофлоксацина.
Применение кормового сырья и комбикормов на основе растительного белка ГМ-культур может нести риски, связанные с поступлением в пищевую цепь глифосата и его метаболита. Данные соединения отнесены к группе «потенциально
канцерогенных для человека». В результате исследований
значительные их концентрации были обнаружены в сырье
и комбикормах для сельскохозяйственных животных, объектов аквакультуры, кошек и собак. Максимальная концентрация глифосата в комбикормах для продуктивных животных составила 0,47 мг/кг. При проверке импортируемого
в Российскую Федерацию сырья, в том числе сои и соевого
шрота, в 30–40% случаев выявляли глифосат и его метаболит, максимальные концентрации которых доходили до
3,7–2,8 мг/кг соответственно .
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия» - научно-практический журнал, посвящён проблемам антимикробной терапии и клинической микробиологии. Журнал публикует статьи ведущих специалистов в области микробиологии, фармакологии, инфекционных болезней, эпидемиологии и др.
Рассмотрен простой, экспрессный и доступный способ идентификации и определения антибактериальных веществ фторхинолонового ряда в природных водах сорбционно-флуориметрическим методом с использованием смартфона и хемометрического анализа. Предложенный подход основан на статической сорбции фторхинолонов силикагелем из водных растворов. При облучении сорбата
монохроматическим ультрафиолетовым светом (365 нм) наблюдается синяя или бирюзовая флуоресценция, измерение интенсивности которой осуществляли с помощью смартфона. В качестве аналитического сигнала использовали значения базисных компонентов цветометрической системы RGB с последующим расчетом итогового цвета. Показана возможность использования хемометрического анализа, позволяющего сократить время анализа и визуализировать данные исследования. Обработку массива данных проводили методами главных компонент, иерархического кластерного анализа и метода
k-means c применением программного обеспечения XLSTAT. Проведена идентификация и оценка количественного содержания антибиотиков фторхинолонового ряда в природной воде с использованием
хемометрического анализа. Диапазоны определяемых содержаний – 0.002-0.2 мкг/см3
. Предложен способ определения фторхинолонов в природных водах. Относительная погрешность результатов анализа
не превышает 20%. Василий Григорьевич Амелин1,2✉, Зин Алабдин Чалави Шаока1,
Дмитрий Сергеевич Большаков3, Алексей Викторович Третьяков
