Монография является первой обобщающей отечественной работой, посвященной изучению вопросов получения и применения белковых гидролизатов из отходов пушного звероводства. В монографии описана история развития отечественного звероводства. Отражены проблемы отрасли, связанные с состоянием кормовой базы в настоящее время. Дана характеристика гидролизатам, полученным различными методами. Представлены физико-химические свойства, аминокислотный состав белковых кормовых добавок, в том числе животного происхождения, на живой организм. Описаны виды исходного сырья. Изложены результаты современных работ, посвященных оригинальному методу получения белковых гидролизатов из отходов пушного звероводства и определению его свойств, влияющих на организм пушных зверей. Предназначена для студентов ВУЗов и средних специальных учебных заведений, слушателей ФПК. Содержит материалы, полезные специалистам-практикам.
Несмотря на широкое применение в ветеринарной практике живых и инактивированных вакцин против рожи свиней, заболевание имеет повсеместное распространение. Возможно это связано с широким бесконтрольным применением антибиотиков в первую очередь при выращивании молодняка животных, что снижает уровень и продолжительнось поствакцинального иммунитета, особенно в случае применения живых вакцин, а также способствующих формированию антибиотикорезистентных культур возбудителя. В связи с чем определенный интерес вызывают разработка и применение инактивированных вакцин, отчасти решающих эту проблему и представляющих интерес с экологической точки зрения. Разумеется, это не исключает возможности применения живых вакцин. Настоящая работа обусловлена необходимостью решения проблемы накопления бактериальной массы культур производственных штаммов в процессе изготовления вакцин, а также определения высокоиммуногенных вакцинных штаммов, из числа рекомендованных для применения на сегодняшний день. В ходе выполнения настояшей работы, в опыте на белых мышах установлены различия в значениях показателей ИмД50 производственных вакцинных штаммов Erysipelothrix rhusiopathiae BP-2 и M-2, свидетельствующие о более высокой иммуногенной активности штамма M-2. Также показано что максимальное накопление бактериальной массы кульуры штамма Erysipelothrix rhusiopathiae обеспечило их выращивание на жидкой питательной среде «ГРМ-бульон» с добавлением лошадиной сыворотки и декстрозы.
Кормовая добавка «Protigen» - инновационный ингредиент, обеспечивающий медленное высвобождение небелкового азота (NPN) в рубце. Это гарантирует, что бактерии рубца имеют постоянный доступ к этому важному источнику питания, что приводит к увеличению количества микробного протеина, перевариванию клетчатки и появлению доступной энергии для синтеза молока и производства мяса. Целью нашей работы было проведение доклинических исследований кормовой добавки «Protigen» для ветеринарного применения, в частности острой токсичности, на лабораторных животных и установление класса острой опасности. Исследования острой токсичности были проведены на аутбредных крысах весом 190-210 грамм в марте 2022 года в Санкт-Петербургском государственном университете ветеринарной медицины. При изучении острой токсичности при внутрижелудочном введении, «Protigen» вводили в дозе 5000 мг/кг массы животного. Добавку вводили сначала одному животному, наблюдение продолжали в течение 3 суток. Гибели животного и признаков интоксикации не наблюдали
Широкое применение антимикотических средств для терапии микозов у человека и животных вызывает беспокойство медицинских и ветеринарных специалистов в связи с возникновением резистентности патогенных и условно-патогенных грибов к противогрибковым препаратам. За последние годы накоплена информация о различных молекулярных механизмах, лежащих в основе данного явления, однако для успешного прогнозирования резистентности в различных группах грибов необходимо провести углубленные исследования. Для терапии и профилактики грибковых заболеваний активно применяют несколько групп препаратов, среди которых наиболее часто используют азолы и аллиламины, что приводит к накоплению резистентности патогенных и условно-патогенных грибов к этим противогрибковым средствам. В работе представлены результаты использования молекулярно-генетических методов для выявления устойчивых к азолам изолятов Candida albicans и устойчивых к тербинафину изолятов грибов рода Trichophyton. Анализ нуклеотидных последовательностей гена ERG11 10 изолятов Candida albicans, выделенных от разных видов животных, позволил разделить фенотипически устойчивые и чувствительные штаммы, однако не дал возможности дифференцировать штаммы, обладающие дозозависимой устойчивостью к азолам. Изучение однонуклеотидных полиморфизмов в гене SQLE, ассоциированном с развитием устойчивости к тербинафину, у 12 изолятов грибов рода Trichophyton не позволило разделить их по резистентности, что, вероятно, связано с действием другого механизма устойчивости, который может наблюдаться у данных штаммов. Полученные результаты исследований служат основанием для использования молекулярно-генетических методов для характеристики грибов рода Candida и Trichophyton, однако, с учетом биологических особенностей патогенов разных групп, для прогнозирования резистентности целесообразно использовать несколько значимых участков генома или результаты полногеномного секвенирования, а также анализ экспрессии генов. Козлова А.Д., Яцентюк С.П., Соколов В.В., Маноян М.Г.
Приведены данные о методах выявления в сырье и продуктах животного происхождения
бактерий рода Listeria monocytogenes, являющихся патогенными для организма человека. Для изучения
проблемы проведён анализ литературных источников и нормативно-правовой базы. Использованы экспрессметоды определения выделенных микроорганизмов с последующим определением их чувствительности
к ряду антибактериальных препаратов. Проанализированы все случаи зафиксированной высокой антибиотикорезистентности штаммов микроорганизмов. По результатам видовой идентификации выявлено
50 проб, положительных на Listeria monocytogenes. Экспресс-методы исследования позволили провести
идентификацию до вида. Выделенные бактерии рода Listeria monocytogenes оказались наиболее чувствительны к группам фторхинолонов (Ципрофлоксацин, Моксифлоксацин); пенициллинов (Ампициллин);
карбапенемов – (Меропенем); азалидов – (Эритромицин); аминогликозидов – (Гентамицин); сульфаниламидов – (Триметоприм, Сульфаметоксазол). Отсутствие роста микроорганизма при минимальных
концентрациях антибактериальных препаратов свидетельствует о слабой антибиотикорезистентности
полученных штаммов.
Бюллетень для врачей-неврологов, начал выходить в апреле 2011 г. Бюллетень Национального общества по изучению болезни Паркинсона и расстройств движений выходит при поддержке ФГБУ «Научный центр неврологии». Основная задача нашего издания – представлять реальный срез всего многообразия проводимых в нашей стране научных, организационных и образовательных мероприятий в рамках деятельности Национального общества по изучению болезни Паркинсона и расстройств движений, знакомить с опытом работы профильных специализированных центров, а также отражать основные достижения отечественных ученых в сопоставлении с мировым опытом в данной сложнейшей области неврологии.Издание будет полезным широкому кругу исследователей, практических врачей, преподавателей, клинических ординаторов и студентов, будет способствовать повышению уровня оказания специализированной помощи пациентам с двигательными расстройствами, дальнейшему развитию клинической неврологии в Российской Федерации.
Бруцеллез - инфекционная зоонозная болезнь, вызываемая бактериями рода Brucella. Руководство МЭБ по диагностическим тестам и вакцинам для наземных животных (0IE) рекомендует для исключения бруцеллеза при международной торговле животными применять 4 серологических теста: агглютинационные тесты с забуференными антигенами Brucella, реакцию связывания комплемента (РСК), иммуноферментный анализ (ИФА) и метод поляризации флуоресценции (МПФ). Из них в России не применяют только МПФ. В данной работе оценена возможность использования МПФ для выявления бруцеллезных антител в сыворотке крови крупного рогатого скота. Антигеном в МПФ служил флуоресцентно меченный олигосахарид, полученный из B. abortus и B. melitensis. Показано, что сигнал поляризации флуоресценции увеличивается пропорционально содержанию антител в положительных сыворотках. Полученные результаты подтверждают возможность применения МПФ для обнаружения антител против бактерий рода Brucella.
Герпесвирус крупного рогатого скота 6 типа (BoHV-6) впервые был выделен в 1972 г. в США от крупного рогатого скота, больного лимфосаркомой. Возбудитель за последние 20 лет практически одновременно был детектирован у этих животных в США (1998), Великобритании (2008), Канаде (2010), Бельгии (2013), Польше (2013), России (2013), Новой Зеландии (2014). Причем исследователи детектировали BoHV-6 как у клинически здорового крупного рогатого скота разных половозрастных групп, так и у животных с разными патологиями. В результате они пришли к мнению, что вирус у крупного рогатого скота распространен повсеместно и скорее всего не связан с какой-либо определенной болезнью. Тем не менее выявление возбудителя от животных с патологиями органов репродуктивной системы и вымени, а также от особей, больных лейкозом крупного рогатого скота, заставил их задуматься о механизмах передачи вируса и, самое главное, о его этиологической роли в структуре инфекционной патологии крупного рогатого скота. В настоящей статье обобщены данные разных исследователей по изучению этиологической и патогенетической роли BoHV-6 в инфекционной патологии крупного рогатого скота, рассмотрены теории, обсуждаемые в мировой научной литературе, и представлено собственное мнение авторов.
Разработана методика количественного определения остатков полипептидных антибиотиков (бацитрацин А, бацитрацин В, колистин А, колистин В, полимиксин В1, полимиксин В2, актиномицин D, вирджиниамицин S1, вирджиниамицин М1 и новобиоцин) в продукции животного происхождения. Этап подготовки образцов основан на применении твердофазной экстракции (ТФЭ) с последующим концентрированием и перерастворением. В работе использовали метод хромато-масс-спектрометрии в положительном режиме ионизации, с регистрацией ионов фрагментов. Предел количественного определения (ПКО) анализируемых соединений находится в диапазоне от 1 до 5 мкг/кг. Методика прошла метрологическую аттестацию для трех типов продукции животноводства - мышечной ткани, печени и молока. Расширенная неопределенность результатов измерений составляет от 20 до 70 % при коэффициенте охвата k=2.
