Для нормального функционирования организма необходимы
аминокислоты, источником которых являются белки, поступающие с пищей.
Таурин (2-аминоэтансульфоновая кислота) – свободная, полунезаменимая,
серосодержащая β-аминокислота, образующаяся в малой доле из метионина, а
также при декарбоксилировании аминокислоты цистеина (в форме
цистеиновой кислоты). Цистеиндиоксигеназа катализирует превращение
цистеина в цистеинсульфинат, который затем превращается в гипотаурин
посредством цистеинсульфинатдекарбоксилазы. Гипотаурин легко окисляется
с образованием таурина [1].
Как отмечено авторами, такими как Рядчикова О. Л., Афанасьева Н. А.,
Калиновска В. А., и др., содержание таурина в кормовых добавках играет
важную роль для животных, а в частности для мелких домашних животных,
которые не способны синтезировать достаточное количество таурина, который
необходим для формирования иммунной системы, оптимизации формирования
желчных кислот и улучшения зрения животных. Именно поэтому таурин
должен поступать в организм из вне, основой могут служить кормовые добавки
с содержанием данной аминокислоты [2].
В настоящее время в литературных источниках практически отсутствует
информация по определению таурина методом капиллярного электрофореза в
кормовых добавках, что делает работу актуальной и востребованной.
Разработанная методика предоставит возможность осуществлять контроль
кормовых добавок.
Таурин – аминокислота, которая играет важную роль во многих процессах
в различных тканях организма животных. Собаки обладают способностью
вырабатывать таурин из двух других аминокислот – цистеина и метионина.
Однако у них возможен недостаток данного микронутриента, поэтому он
остается важным питательным веществом, которое стоит включать в рацион
собаки. У кошек, для которых таурин является незаменимой аминокислотой,
недостаток таурина приводит к нарушению деятельности миокарда,
дегенерации сетчатки и нарушению репродуктивных функций. Основными
источниками микронутриентов для животных являются высококачественные
корма.
Разработанная методика позволит контролировать качество кормов,
кормового сырья и кормовых добавок.
Подготовку проб проводили следующим образом: взвешивали 0.05-1 г
образца в зависимости от содержания таурина, экстрагировали 0.1 н раствором
соляной кислоты, центрифугировали и фильтровали. В случае определения
таурина в кормовых добавках, содержащих более 10 % таурина, полученный
экстракт разбавляли. Далее дериватизировали полученные образцы и сразу же
проводили анализ методом ВЭЖХ, так как комплексы с ортофталевым
альдегидом неустойчивы и разрушаются в течение 7-10 минут.
В статье приведены результаты исследований по изменению массы яиц после их обработки композицией биостимуляторов, было установлено, что разница по массе сухого и влажного яйца после обработки составляет 0,99-1%, разница между сухим яйцом и после высыхания также составляет 1% по массе.
В свою очередь нервная ткань является одной из наиболее метаболически активных
[1]. В этой связи для адекватного протекания в ней обменных процессов, необходима более
высокая концентрация кислорода даже в покое. Однако несмотря на то, что он жизненно
необходим для поддержания жизнеспособности клетки, в условиях развития реакций
стресса, кислород также может являться фактором повреждения, определяя разрушение
различных структур клетки, а в ряде случаев её гибель. Так, в условиях воздействия
агрессивных факторов он преобразуется в супероксидную форму, что во многом
обусловлено нарушением реакций митохондриальной дыхательной цепи, а вместе с тем
истощением внутри- и внеклеточной антиоксидантной системы [2]. Следует отметить, что
быстрое исчерпание таковой связано, в большинстве своём с недостаточностью её
ферментов в частности: cупероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и каталазы в нервной
системе.
Предложен экспрессный и простой метод идентификации масла и жировых продуктов растительного происхождения по их собственной флуоресценции и диффузному отражению ИК-излучения методами цветометрии и ближней ИК-спектроскопии. Для регистрации аналитического сигнала использованы устройства, напечатанные на 3D-принтере, со встроенными УФ- и ИК-светодиодными матрицами (390 и 850 нм) и смартфон с установленным приложением PhotoMetrix PRO®, а также метод ИК-Фурье-спектроскопии в ближней ИК-области (10000—4000 см–1) с приставкой NIRA для анализа твердых образцов. Обработка спектров диффузного отражения проведена с помощью приложений TQ Analyst и The Unscrambler X. Идентификация и дифференциация исследуемых объектов осуществлена с использованием хемометрических алгоритмов — метода главных компонент (PCA) и иерархического кластерного анализа (HCA).
В России зарегистрированы ветеринарные лекарственные препараты системного действия в форме таблеток для приема внутрь, которые по своему назначению аналогичны ушедшим с российского рынка ветпрепаратам «Бравекто» и «Симпарика». Об этом сообщили «Ветеринарии и жизни» во Всероссийском государственном центре качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов (ФГБУ «ВГНКИ» Россельхознадзора).
Предложено УФ-устройство, напечатанное на 3D принтере, для анализа молочной продукции (молоко питьевое, творог, кефир, сметана, сливочное масло) с использованием смартфона и программного обеспечения PhotoMetrix PRO®. Рассмотрено применение одномерного и многомерного анализа, метода главных компонент для идентификации, аутентификации и установления фальсификации молочных продуктов.
Очетание скрининга проб и последующего подтверждающего определения загрязнителей является оптимальной стратегией рутинных исследований при реализации программ мониторинга безопасности пищевой продукции. Ультравысокоэффективная жидкостная хроматография с масс-спектрометрией высокого разрешения предложена для многокомпонентного определения остаточных содержаний широкого спектра лекарственных препаратов для ветеринарного применения и их метаболитов с минимальной пробоподготовкой. Для нивелирования матричного эффекта использовали метод изотопного разбавления. Предлагаемая вданной работе методика позволяет одновременно идентифицировать и оценить остаточные содержания 214 лекарственных препаратов для ветеринарного применения на уровне их предела обнаружения 0.1-10.0 нг/г, существенно сократить продолжительность (40-50 мин) и стоимость анализа.
Наиболее важная задача в современном сельском хозяйстве – безопасность пищевой
продукции. Применяемые в ветеринарии препараты для лечения и профилактики различных
заболеваний животных в последствии могут содержаться в продуктах питания, что в свою очередь
может формировать антибиотикорезистентность у патогенных микроорганизмов, а также оказывать
канцерогенное, токсическое или аллергическое воздействие на организм человека. Одним из таких
препаратов является апрамицин – представитель группы аминогликозидных антибиотиков широкого
спектра действия, который применяют для лечения колибактериоза и сальмонеллеза у КРС и
домашней птицы.Этот антибиотик проникает в яйцо и молоко, поэтому его не назначают несушкам и
дойным животным. На территории РФ и ЕАЭС установлены максимально допустимые уровни
апрамицина в пищевом сырье.
Для контроля за содержанием апрамицина в пищевой продукции был разработан метод
твердофазного конкурентного иммуноферментного анализа (ИФА), основанный на конкурентном
взаимодействии свободного антигена в пробе с антигеном, меченным ферментом, за центры
связывания специфических антител.
В рамках обеспечения безопасности продукции животноводства
повышенного внимания требует контроль содержания остаточных количеств ветеринарных
препаратов, пестицидов, микотоксинов и их метаболитов. Получаемая в результате целевого
анализа спектральная информация относится только к веществам, входящим в область
применения используемых методик. Возможное присутствие в образцах других
загрязнителей в режиме МС/МС не регистрируется. В связи с этим актуальна разработка и
120
внедрение методик нецелевого анализа загрязнителей с использованием масс-спектрометрии
высокого разрешения. Сбор спектральных данных как правило осуществляется в режимах
Data-Dependent Acquisition mode и Data-Independent Acquisition mode, либо с помощью
интегрированных подходов при использовании ультравысокоэффективной жидкостной
хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией высокого разрешения.